Las aflatoxinas son metabolitos tóxicos producidos por Aspergillus flavus y Aspergillus parasiticus que crecen en alimentos y piensos. Son altamente tóxicos y cancerígenos, siendo la aflatoxina B₁ la más potente. La contaminación puede ocurrir en cereales, nueces y sus productos derivados, especialmente en condiciones cálidas y húmedas. La detección normalmente requiere derivatización para mejorar la fluorescencia. Los métodos tradicionales de derivatización del ácido trifluoroacético (TFA) previo a la columna o del yodo posterior a la columna son complejos e implican reactivos peligrosos. La derivatización fotoquímica ofrece una alternativa más sencilla, segura y respetuosa con el medio ambiente. Esta solución, basada en GB/T 5009.23-2006, proporciona un flujo de trabajo completo para el análisis de aflatoxinas B₁, B₂, G₁, G₂ en productos de cereales mediante HPLC con derivatización poscolumna.
Normas de aflatoxinas: aflatoxinas B₁, B₂, G₁, G₂ (pureza apropiada para análisis cuantitativos); Metanol, grado HPLC; acetonitrilo, calidad HPLC; agua, desionizada (18,2 MΩ·cm);
Otros materiales: columnas de inmunoafinidad o cartuchos de extracción en fase sólida (para limpieza de muestras, según métodos estándar), papel de filtro de fibra de vidrio, tubos de centrífuga, matraces aforados, pipetas, etc.
Soluciones en stock: Prepare soluciones madre individuales de aflatoxinas B₁, B₂, G₁, G₂ en metanol en concentraciones conocidas (p. ej., 1 a 10 μg/ml). Conservar protegido de la luz a baja temperatura (≤4°C).
Soluciones de trabajo mixtas: Diluir volúmenes apropiados de soluciones madre con fase móvil para preparar soluciones de trabajo estándar mixtas en las concentraciones deseadas. Para estudios de linealidad, la concentración típica varía: B₁ y G₁ de 0,2 a 20,0 μg/L; B₂ y G₂ de 0,06 a 6,0 μg/L.
Los pasos generales de la preparación de muestras incluyen:
Opciones de configuración del sistema (Tabla 1):
Tabla 1. Opciones de configuración del sistema
| Componente | Sistema Agress 1100 | Sistema iChrom 5100 |
|---|---|---|
| Bomba | Bomba de alta presión P1100 | P5102 Bomba de alta presión |
| Detector | D1100 UV-Vis Detector (opcional) + Detector de Fluorescencia | Detector UV-Vis D5101 (opcional) + Detector de fluorescencia |
| Inyector | Inyector manual Rheodyne 7725i | Inyector manual Rheodyne 7725i (o muestreador automático S5101 opcional) |
| Horno de columna | Horno de columna O1110 | Horno de columna O5100 (opcional) |
| Derivatizador post-columna | Derivatizador fotoquímico PD3110 | Derivatizador fotoquímico PD3110 |
| Columna | SinoChrom ODS-BP (5 µm, 4,6×200 mm) | SinoChrom ODS-BP (5 µm, 4,6×200 mm) |
| Estación de datos | Estación de datos de cromatografía | Estación de datos de cromatografía |
| Accesorios | Soporte de válvula VB1100, bandeja de disolvente ST1100 | Soporte de válvula VB5101, organizador del sistema M5102, adaptador AD, kit de herramientas 5100 |
Condiciones cromatográficas
Separación estándar
En la Figura 1 se muestra un cromatograma típico de una solución estándar de aflatoxina mixta (20,0 μg/L) después de la derivatización fotoquímica. La derivatización mejora significativamente las señales de B₁ y G₁ y al mismo tiempo tiene un efecto mínimo sobre B₂ y G₂, como se resume en la Tabla 2.

Fig.1. Cromatograma de una solución estándar mixta (20,0 μg/mL) de aflatoxina
Tabla 2. Comparación de la respuesta antes y después de la derivatización
| aflatoxina | Antes de la derivatización | Después de la derivatización | ||||
|---|---|---|---|---|---|---|
| Área de pico (mV·s) | Altura pico (mV) | Ruido (mV) | Área de pico (mV·s) | Altura pico (mV) | Ruido (mV) | |
| G₂ | 160.22 | 7.98 | 0.025 | 149.77 | 7.82 | 0.025 |
| G₁ | 39.49 | 1.72 | 256.92 | 11.92 | ||
| B₂ | 752.59 | 30.79 | 711.06 | 30.43 | ||
| B₁ | 295.13 | 9.87 | 982.48 | 34.92 | ||
Límite de linealidad y detección
Las curvas de calibración se construyeron utilizando soluciones estándar mixtas en diversas concentraciones. Los límites de linealidad y detección se resumen en las Tablas 3.
Tabla 3. Ecuaciones lineales y coeficientes de correlación
| aflatoxina | Ecuación lineal | Coeficiente de correlación (R) | rango lineal | MDL (μg/kg) |
|---|---|---|---|---|
| G₂ | y = 22,185x - 0,3282 | 0.99990 | 0,06 – 6,0 µg/l | 0.03 |
| G₁ | y = 23,547x + 1,0349 | 0.99987 | 0,2 – 20,0 µg/L | 0.08 |
| B₂ | y = 33,410x + 1,6965 | 0.99984 | 0,06 – 6,0 µg/l | 0.01 |
| B₁ | y = 41,875x + 3,3725 | 0.99994 | 0,2 – 20,0 µg/L | 0.03 |
Análisis de muestras
Se analizó una muestra de maíz comprada comercialmente siguiendo el procedimiento descrito. Los resultados se muestran en la Tabla 4 y la Figura 2.
Cuadro 4. Contenido de aflatoxinas en la muestra de maíz
| aflatoxina | Concentración en Extracto (μg/L) | Contenido en muestra (μg/kg) |
|---|---|---|
| G₂ | No detectado | No detectado |
| G₁ | 0.08 | 0.08 |
| B₂ | No detectado | No detectado |
| B₁ | No detectado | No detectado |

Fig.2. Cromatograma de una solución estándar mixta de aflatoxinas (20,0 μg/mL) y una solución de muestra de maíz