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Determinación de aflatoxinas B₁, B₂, G₁, G₂ en alimentos y cereales

  • analito: Aflatoxinas B₁, B₂, G₁, G₂
  • Sistema: Sistema HPLC Agress 1100 o iChrom 5100 con detector de fluorescencia y derivatizador fotoquímico poscolumna
  • Columna: SinoChrom ODS-BP (5 µm, 4,6 × 200 mm)
  • Destacar: Sensibilidad mejorada para B₁ y G₁ mediante derivatización poscolumna sin reactivos adicionales.
Introducción

Las aflatoxinas son metabolitos tóxicos producidos por Aspergillus flavus y Aspergillus parasiticus que crecen en alimentos y piensos. Son altamente tóxicos y cancerígenos, siendo la aflatoxina B₁ la más potente. La contaminación puede ocurrir en cereales, nueces y sus productos derivados, especialmente en condiciones cálidas y húmedas. La detección normalmente requiere derivatización para mejorar la fluorescencia. Los métodos tradicionales de derivatización del ácido trifluoroacético (TFA) previo a la columna o del yodo posterior a la columna son complejos e implican reactivos peligrosos. La derivatización fotoquímica ofrece una alternativa más sencilla, segura y respetuosa con el medio ambiente. Esta solución, basada en GB/T 5009.23-2006, proporciona un flujo de trabajo completo para el análisis de aflatoxinas B₁, B₂, G₁, G₂ en productos de cereales mediante HPLC con derivatización poscolumna.

Estándares y reactivos

Normas de aflatoxinas: aflatoxinas B₁, B₂, G₁, G₂ (pureza apropiada para análisis cuantitativos); Metanol, grado HPLC; acetonitrilo, calidad HPLC; agua, desionizada (18,2 MΩ·cm);

Otros materiales: columnas de inmunoafinidad o cartuchos de extracción en fase sólida (para limpieza de muestras, según métodos estándar), papel de filtro de fibra de vidrio, tubos de centrífuga, matraces aforados, pipetas, etc.

Preparación de solución estándar

Soluciones en stock: Prepare soluciones madre individuales de aflatoxinas B₁, B₂, G₁, G₂ en metanol en concentraciones conocidas (p. ej., 1 a 10 μg/ml). Conservar protegido de la luz a baja temperatura (≤4°C).

Soluciones de trabajo mixtas: Diluir volúmenes apropiados de soluciones madre con fase móvil para preparar soluciones de trabajo estándar mixtas en las concentraciones deseadas. Para estudios de linealidad, la concentración típica varía: B₁ y G₁ de 0,2 a 20,0 μg/L; B₂ y G₂ de 0,06 a 6,0 μg/L.

Pretratamiento de muestra

Los pasos generales de la preparación de muestras incluyen:

  • Extracción: Pesar una porción representativa de la muestra molida (por ejemplo, maíz, grano) y extraer con una solución de metanol y agua.
  • Limpieza: Pasar el extracto a través de una columna de inmunoafinidad o un cartucho de extracción en fase sólida específico para aflatoxinas. Lavar para eliminar impurezas.
  • Elución: Eluir las aflatoxinas con metanol o acetonitrilo.
  • Concentración (si es necesario): Evaporar el eluato bajo una suave corriente de nitrógeno y reconstituir en fase móvil hasta un volumen conocido.
  • Filtración: Filtrar a través de una membrana de 0,45 μm antes de la inyección por HPLC.
Instrumentos y equipos

Opciones de configuración del sistema (Tabla 1):

Tabla 1. Opciones de configuración del sistema

Componente Sistema Agress 1100 Sistema iChrom 5100
Bomba Bomba de alta presión P1100 P5102 Bomba de alta presión
Detector D1100 UV-Vis Detector (opcional) + Detector de Fluorescencia Detector UV-Vis D5101 (opcional) + Detector de fluorescencia
Inyector Inyector manual Rheodyne 7725i Inyector manual Rheodyne 7725i (o muestreador automático S5101 opcional)
Horno de columna Horno de columna O1110 Horno de columna O5100 (opcional)
Derivatizador post-columna Derivatizador fotoquímico PD3110 Derivatizador fotoquímico PD3110
Columna SinoChrom ODS-BP (5 µm, 4,6×200 mm) SinoChrom ODS-BP (5 µm, 4,6×200 mm)
Estación de datos Estación de datos de cromatografía Estación de datos de cromatografía
Accesorios Soporte de válvula VB1100, bandeja de disolvente ST1100 Soporte de válvula VB5101, organizador del sistema M5102, adaptador AD, kit de herramientas 5100

Condiciones cromatográficas

  • Columna: SinoChrom ODS-BP (5 µm, 4,6 × 200 mm)
  • Fase Móvil: Metanol / Acetonitrilo / Agua = 20 : 20 : 60 (V/V/V)
  • Tasa de flujo: 0,8 ml/min
  • Detección: Detector de fluorescencia, longitud de onda de excitación 360 nm, longitud de onda de emisión 450 nm
  • Derivatización posterior a la columna: Derivatizador fotoquímico (PD3110) instalado entre la columna y el detector
  • Volumen de inyección: 20 µL
  • Temperatura de la columna.: Ambiente
Resultados experimentales

Separación estándar

En la Figura 1 se muestra un cromatograma típico de una solución estándar de aflatoxina mixta (20,0 μg/L) después de la derivatización fotoquímica. La derivatización mejora significativamente las señales de B₁ y G₁ y al mismo tiempo tiene un efecto mínimo sobre B₂ y G₂, como se resume en la Tabla 2.

Fig.1. Cromatograma de una solución estándar mixta (20,0 μg/mL) de aflatoxina

Tabla 2. Comparación de la respuesta antes y después de la derivatización

aflatoxina Antes de la derivatización Después de la derivatización
Área de pico (mV·s) Altura pico (mV) Ruido (mV) Área de pico (mV·s) Altura pico (mV) Ruido (mV)
G₂ 160.22 7.98 0.025 149.77 7.82 0.025
G₁ 39.49 1.72 256.92 11.92
B₂ 752.59 30.79 711.06 30.43
B₁ 295.13 9.87 982.48 34.92

Límite de linealidad y detección

Las curvas de calibración se construyeron utilizando soluciones estándar mixtas en diversas concentraciones. Los límites de linealidad y detección se resumen en las Tablas 3.

Tabla 3. Ecuaciones lineales y coeficientes de correlación

aflatoxina Ecuación lineal Coeficiente de correlación (R) rango lineal MDL (μg/kg)
G₂ y = 22,185x - 0,3282 0.99990 0,06 – 6,0 µg/l 0.03
G₁ y = 23,547x + 1,0349 0.99987 0,2 – 20,0 µg/L 0.08
B₂ y = 33,410x + 1,6965 0.99984 0,06 – 6,0 µg/l 0.01
B₁ y = 41,875x + 3,3725 0.99994 0,2 – 20,0 µg/L 0.03

Análisis de muestras

Se analizó una muestra de maíz comprada comercialmente siguiendo el procedimiento descrito. Los resultados se muestran en la Tabla 4 y la Figura 2.

Cuadro 4. Contenido de aflatoxinas en la muestra de maíz

aflatoxina Concentración en Extracto (μg/L) Contenido en muestra (μg/kg)
G₂ No detectado No detectado
G₁ 0.08 0.08
B₂ No detectado No detectado
B₁ No detectado No detectado

Fig.2. Cromatograma de una solución estándar mixta de aflatoxinas (20,0 μg/mL) y una solución de muestra de maíz

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